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Il lievito di fissione Srr1 e Skb1 promuovono la formazione di isocromosomi nel centromero

May 16, 2023May 16, 2023

Biologia delle comunicazioni volume 6, numero articolo: 551 (2023) Citare questo articolo

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Rad51 mantiene l'integrità del genoma, mentre Rad52 provoca una ricombinazione omologa non canonica che porta a grossolani riarrangiamenti cromosomici (GCR). Qui troviamo che il lievito di fissione Srr1/Ber1 e Skb1/PRMT5 promuove i GCR nei centromeri. Analisi genetiche e fisiche mostrano che le mutazioni srr1 e skb1 riducono la formazione di isocromosomi mediata dalle ripetizioni invertite del centromero. srr1 aumenta la sensibilità al danno al DNA nelle cellule rad51 ma non abolisce la risposta al checkpoint, suggerendo che Srr1 promuove la riparazione del DNA indipendente da Rad51. srr1 e rad52 in modo additivo, mentre skb1 e rad52 riducono epistaticamente i GCR. A differenza di srr1 o rad52, skb1 non aumenta la sensibilità al danno. Skb1 regola la morfologia cellulare e il ciclo cellulare rispettivamente con Slf1 e Pom1, ma né Slf1 né Pom1 causano GCR. La mutazione dei residui conservati nel dominio dell'arginina metiltransferasi di Skb1 riduce notevolmente i GCR. Questi risultati suggeriscono che, attraverso la metilazione dell'arginina, Skb1 forma strutture di DNA aberranti che portano a GCR dipendenti da Rad52. Questo studio ha scoperto i ruoli di Srr1 e Skb1 nei GCR nei centromeri.

Riarrangiamenti cromosomici grossolani (GCR), come le traslocazioni, possono verificarsi utilizzando sequenze ripetitive abbondanti e diffuse nei genomi eucariotici1. Negli esseri umani, il numero totale di sequenze ripetitive, comprese le ripetizioni satellitari e gli elementi trasponibili, rappresenta il 54% del genoma2,3. I GCR provocano la morte cellulare e malattie genetiche, compreso il cancro. D’altro canto, i GCR possono rappresentare una forza trainante dell’evoluzione creando diversità genomica4. Pertanto, i GCR non sono solo fenomeni patologici ma anche fisiologici.

Il centromero che garantisce la corretta segregazione cromosomica contiene sequenze ripetitive di DNA in molti eucarioti. I centromeri umani (≥ 3 Mb) contengono satellite α e altri tipi di ripetizioni satellitari, elementi trasponibili e duplicazioni segmentali5. L'orientamento delle ripetizioni del centromero, comprese le ripetizioni di ordine superiore dei satelliti α, cambia all'interno di un centromero, formando ripetizioni di DNA invertite. Nonostante l'importante ruolo nella segregazione cromosomica, il centromero è un punto caldo per la rottura e il riarrangiamento cromosomico6,7,8,9,10. La ricombinazione tra sequenze ripetitive nel centromero forma cromosomi anomali11,12,13. Le traslocazioni robertsoniane, una fusione di due cromosomi acrocentrici in corrispondenza o attorno ai centromeri, sono la forma di anomalia cromosomica osservata più frequentemente negli esseri umani e colpiscono 1 neonato su 1.00014. Gli isocromosomi i cui bracci sono immagini speculari l'uno dell'altro si trovano comunemente nelle cellule tumorali15. Gli isocromosomi di chr21 e chrX causano rispettivamente le sindromi di Down e Turner16,17. Rispetto ai centromeri dei mammiferi, i centromeri del lievito di fissione S. pombe sono corti (35 ~ 110 kb) ma contengono ripetizioni di DNA invertite che fiancheggiano una sequenza centrale non ripetitiva18,19. In questo fungo, gli isocromosomi vengono prodotti utilizzando ripetizioni invertite del DNA nel centromero20,21,22. La minore complessità della sequenza del DNA centromerico rende il lievito di fissione un sistema eccellente per studiare il meccanismo dei GCR centromerici.

La ricombinazione omologa è necessaria per riparare danni dannosi al DNA come le rotture del doppio filamento23. Rad51 è l'attore chiave nella ricombinazione omologa canonica e catalizza la ricerca dell'omologia e lo scambio di filamenti di DNA, formando anelli di spostamento. BRCA1 e BRCA2 dei mammiferi facilitano la ricombinazione dipendente da Rad51 e le loro mutazioni aumentano i GCR e predispongono i portatori al cancro24,25. La ricombinazione omologa mantiene l'integrità del centromero. Nei mammiferi, l'inattivazione di Rad51 aumenta la ricombinazione aberrante nei centromeri9,10,26. Nel lievito a fissione, la perdita di Rad51 aumenta la formazione di isocromosomi nei centromeri20,21,27. Un'analisi dettagliata utilizzando il lievito di fissione ha mostrato che Rad51 promuove preferenzialmente un modo conservativo di ricombinazione: ricombinazione non crossover nei centromeri27,28, sopprimendo così la formazione di isocromosomi.

 300 cells are counted at each point. Pearson's Chi-square test of the septation index between wild-type and other strains at t = 8 h showed that srr1Δ or skb1Δ did not significantly change the septation index (p > 0.05) but chk1Δ increased it. c Chk1 phosphorylation in response to MMS treatment. Before and after 4 h treatment with 0.01% MMS, extracts were prepared from chk1+ (TNF7555) and chk1-HA+ cells of wild-type, srr1Δ, and skb1Δ (TNF8441, 8799, and 8802) and separated by 8% SDS-PAGE. Chk1-HA was detected by Western blotting using anti-HA antibodies (16B12). Whole proteins were stained using Coomassie brilliant blue. Size markers (Takara, 3454 A, CLEARLY stained protein ladder) are shown on the left. wt, wild-type. Uncropped images are shown in Supplementary Fig 6. d Wild-type and srr1Δ (TNF5369 and 5774) cells were plated onto adenine-limited YE plates, on which ade6– cells form red colonies. e Chromosome loss rates of wild-type, srr1Δ, srr1-W157R, skb1Δ, rad51Δ, srr1-W157R rad51Δ, and skb1Δ rad51Δ strains (TNF5369, 5774, 8308, 5772, 5411, 8344, and 5788). The two-tailed Mann-Whitney test. **p < 0.01; ***p < 0.001. Numerical data underlying b, e are provided in Tables C and D, respectively, in Supplementary Data 1./p> 2 × 109 cells mL−1. 100 μL of the cell suspension was mixed with 5 µL of salmon sperm DNA (10 mg mL−1) and the introducing DNA and incubated at room temperature for 10 min. After adding 260 μL of PEG/LiAc/TE (40% PEG4000, 0.1 M lithium acetate, 10 mM Tris-HCl (pH 7.5), 1 mM EDTA), the tube was further incubated for 30 min with rotation. After adding 43 μL of dimethyl sulfoxide (DMSO), the tube was incubated at 42 °C for 5 min. Cells were harvested by centrifugation at 503 × g for 30 s, suspended in YE or YE3S media, and plated on non-selective media. After one day of incubation, the cells were replica plated onto a medium supplemented with G418 (Nacalai Tesque, 09380–86) or hygromycin B (Nacalai Tesque, 09287–87) at a final concentration of 100 µg mL−1 or clonNAT (Werner BioAgents, 5.001.000) at 50 µg mL−1 to select the transformants. We did not pick up exceptionally large colonies of rad52 mutants because they can contain an fbh1 mutation62./p> 300 nuclei were counted in each experiment. Three independent experimental values and their means were shown in the graph using GraphPad Prism 9 for MacOS (GraphPad Software, San Diego, CA). Images were processed using ImageJ2 2.9.0 or Adobe Photoshop Elements 2020./p>